材料
• Spark Cyto 600 全自动实时活细胞成像检测系统,包含湿度盒 (Tecan) 
• D300e 微量加样器 (Tecan) 
• Real Time-Glo™ MT 细胞活力试剂盒(Promega) 
• HeLa 细胞 (ATCC) 
• Jurkat 细胞 (RIKEN BRC) 
• Greiner 384 孔白色透明底聚苯乙烯细胞培养微孔板(cat #:781098) 
• Greiner 384孔白色聚苯乙烯细胞培养微孔板(cat #:781075) 
  
• 台盼蓝,二甲基亚砜 
方法
• 设定Spark Cyto 细胞培养条件: 37 °C ,5 % CO2 
• 将MT细胞活力底物、NanoLuc®酶和细胞培养基孵育至37℃ 
• 用台盼蓝染色HeLa或Jurkat细胞并计算活细胞数 
  
• 将细胞悬浮液稀释至25或125个活细胞/l,并以40l/孔(1000或5000个细胞/孔)的浓度将其接种在384孔板中,在37℃的CO2培养箱中过夜 
说明
• 通过单独的实验提前确定合适的细胞接种密度 
• 细胞接种可以选择单通道或多通道手持加样器或自动化解决方案,如Tecan Fluent® 自动化工作站 
• 空孔使用无菌水填充,减少样品蒸发 
• 准备5X RealTime-Glo试剂用于在培养基中稀释MT细胞活力底物和NanoLuc 酶 
• 每个孔中加入10l 5X Real Time-Glo试剂,并轻轻混合。 
• 在37 °C和5% CO2的细胞培养箱中孵育30-60分钟。注:无菌水和小型湿度盒提前预热至37°C 
  
• 使用D300e T8+分配盒移液溶解在DMSO中的化合物,剂量范围从0到1M,并使每个孔中DMSO的总体积归一化。注:快速移液以减小温度波动 
• 在Spark Cyto中每1小时监测1次发光信号,持续24-48小时(详见实验方法)。注:若在检测过程中需要向湿度盒中添加无菌水,可提前优化实验方法。 
  
• 导出数据并使用Python 3进行数据分析。注:数据分析可以选择Excel等其他软件 
  
 
结果和讨论
  
        通过明场成像24小时观察细胞汇合度,并使用预置的程序进行评估。化合物A给药24小时后,细胞汇合度受到抑制,并呈现剂量依赖性,表明化合物A抑制了细胞增殖(图1)。 
  
      (A) 使用Spark Cyto获得的HeLa 细胞明场图像 (B) 细胞汇合度随时间的变化 (C) 化合物A给药24小时后的归一化值(N = 4,mean ± 95 % CI) 
        使用基于发光的方法检测细胞活力。在0小时的发光信号定义为阴性对照(图2A),24小时内呈现明显的剂量效应(图2B)。与图1的结果抑制,化合物A降低了细胞活力,并呈现剂量依赖性。Spark Cyto的细胞汇合度和细胞活力数据可用于评估药物疗效。 
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